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12 人阅读发布时间:2026-08-25 16:39
很多人敲完 CRISPR 就急着收数据,结果审稿人被一句"你凭什么说敲掉了"问住。一句话结论先给:CRISPR/Cas9 敲除验证最推荐测序法——在靶点周围设计引物扩 DNA 做测序,看基因组有没有被 Cas9 切出的碱基差异;错配酶和 WB 是补充,但 WB 我们不承诺、qPCR 也不建议用。
一句话结论先给:CRISPR/Cas9 敲除验证最推荐测序法——在靶点周围设计引物扩 DNA 做测序,看基因组有没有被 Cas9 切出的碱基差异;错配酶和 WB 是补充,但 WB 我们不承诺、qPCR 也不建议用。
敲除(KO)是用 Cas9 在基因组上制造双链断裂,靠细胞自己的修复机制引入插入/缺失(indel),让编码框乱码、蛋白失去功能。但"设计了 sgRNA"不等于"真的敲掉了",所以必须验证。验证的核心是确认:(1)基因组位点确实被编辑过;(2)目的蛋白水平确实下降。这两件事缺一不可,但用的方法各有讲究。
设计 sgRNA 并包装病毒/转染 → 细胞感染后筛克隆或混合池 → 提取基因组 DNA → 在靶点上下游设计引物扩增 → 验证编辑效率 → 进一步做蛋白水平确认。说白了,先证"基因组被改了",再证"蛋白没了"。顺带一句,敲除不建议用 qPCR 法,因为敲除改的是基因组密码,RNA 水平未必显著下降,qPCR 阴性很容易误导你以为没敲掉、其实早就敲了。
KO验证最好形成“DNA—RNA—蛋白/功能”证据链。 DNA层证明发生了编辑,蛋白或功能层证明基因确实失活。只看一个层面,容易把“编辑发生”和“功能敲除”混为一谈。
| 验证方法 | 怎么做 | 优点 | 注意点 |
|---|---|---|---|
| DNA 产物测序(推荐) | 靶点前后设计引物扩 DNA,对产物测序,跟野生型比对看有无碱基差异 | 直接看编辑痕迹,最直观可靠 | 需要设计合适引物,克隆测序更准 |
| 错配酶法 | 切割后 DNA 留痕迹,错配酶专一识别并切割,电泳判断有无切割行为 | 快速看是否编辑过 | 该试剂盒现已停售,不主动推荐 |
| WB | 检测蛋白水平是否下降 | 直接证明功能缺失 | KO 的 WB 下调有延后效应,慢病毒感染后建议 10–15 天再检测;我们不承诺 WB 水平敲除 |
为什么常用测序法:Cas9 切割基因组后会导致碱基差异,扩增靶点周围序列测序,跟野生型一比对,有差异就说明位点被编辑、靶点有效。这是最直接、最不容易扯皮的证据。
| 环节 | 关注点 | 大白话说明 |
|---|---|---|
| 编辑效率 | indel 比例 | 混合池看整体编辑比例,越高越好 |
| 克隆筛选 | 单克隆测序确认 | 挑单克隆测序,确认是纯合/杂合 KO,避免混合池掩盖 |
| 检测时间 | 慢病毒 KO 后 10–15 天再 WB | 蛋白降解需要时间,太早测会误判 |
| 对照设置 | 阴性对照(NC 病毒/空载体) | 排除病毒本身、筛选压力带来的表型 |
做 KO 效率评估时,混合池先快速看编辑比例,挑出有效 sgRNA;要拿纯合敲除株,就得做单克隆筛选,挑单个克隆测序确认基因型。研究里还离不了对照:阴性对照病毒排除背景, rescue/回补实验验证表型确实由该基因缺失导致。如果是编码基因,最终 WB 看蛋白缺失是绕不开的一步,只是别在感染后第 3 天就急着跑胶。对于难转染的原代、神经、免疫细胞,CRISPR 载体往往得靠病毒送进去,这时候包装体系和滴度就直接决定了你能不能拿到足够多的编辑细胞。
sgRNA 设计、克隆筛选、病毒送递哪一环出问题,KO 课题都可能卡住。尤其难转染细胞和体内实验,载体选慢病毒还是 AAV、sgRNA 怎么排布、要不要多靶点串联,这些往往决定了成败。吉凯基因在 CRISPR 载体与病毒包装上积累了很多客户案例,可以从 sgRNA 设计、载体构建到慢病毒/AAV 包装一站式支持,方案拿不准时先聊一聊能少走很多弯路。